Вирукилл 260 инструкция по применению

DOI: 10.31016/978-5-9902341-5-4.2020.21.361-367

УДК 619:616.993.192.1

новое средство против ооцист кокцидий птиц — ВИРУКИЛЛ 260

Сафиуллин Р. Т.

доктор ветеринарных наук, профессор, главный научный сотрудник лаборатории эпизоотологии

и санитарной паразитологии safiullin_r.t@mail.ru

Чалышева Э. И.

аспирант лаборатории

Краснобаев Ю. В. 1 2,

кандидат биологических наук, ветеринарный врач

Аннотация

Культура производства в промышленном птицеводстве за последние годы поднялась на высокий уровень и продолжает совершенствоваться. Но, несмотря на значительные темпы роста, основной задачей, как и для любой промышленной отрасли, остается экономичность производства. Часто это связано с интенсификацией производства, сокращением периода санитарной подготовки помещений, высокой концентрацией поголовья птицы на ограниченной площади. Данные условия способствуют распространению паразитарных заболеваний, и одно из первых мест приходится на эймериоз. Опыты проводили с сентября по октябрь 2019 г. в лаборатории и виварии института на цыплятах-бройлерах кросса Кобб-500 14-дневного возраста. Предварительно готовили рабочие растворы Вирукилл 260 в разных концентрациях, буферный раствор WSH, средство для консервирования фекалий птиц. Вирукилл — поликомпозиционное средство в форме жидкости для дезинфекции и дезинвазии объектов ветеринарного надзора и профилактики инфекционных и инвазионных болезней животных. Цыплятам первой, второй и третьей групп задавали по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 0,5; 1 и 2%-ными растворами препарата Вирукилла 260, внутрь

1 Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений — филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук» (117218, г. Москва, ул. Б. Черемушкинская, д. 28)

2 ООО «Рациовет» (121170, г. Москва, Кутузовский проспект, д. 36, стр. 2)

с помощью микропипетки; четвертой — также по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 4%-ным раствором фенола. Молодняку пятой группы вводили суспензию со спорулированными ооцистами эймерий в дозе 2000 на 1 мл, необработанной дезинфектантом (зараженный контроль), а шестой — только по 1 мл буферного раствора WSH (незараженный контроль). В течение опыта за ними вели ежедневные клинические наблюдения, учитывая общее состояние, поведение, аппетит, видимые физиологические изменения. Интенсэффективность Вирукилла 260 в 0,5; 1 и 2%-ной концентрации против ооцист кокцидий была на высоком уровне — соответственно 94,15; 97,6 и 98,17%, а фенола в 4%-ной концентрации — 88,75%. В пробах помета бройлеров с первой по пятую группы выделили следующие виды эймерий: Eimeria acervulina (21,4%), E. brunetti (15,7%), Е. maxima (29,6%) и E. tenella (33,3%).

Ключевые слова: цыплята, кокцидиозы, искусственное заражение, Вирукилл 260, Фенол, интенсэффективность.

NEW DRUGS AGAINST OOCIST OF COCKIDIA IN BIRDS — VIRUKILL 260

Safiullin R. T. 1,

Doctor of Veterinary Sciences, Professor, Chief Researcher of the Laboratory of Epizootology and Sanitary Parasitology

safiullin_r.t@mail.ru

Chalysheva E. I. 1,

Postgraduate student of the Laboratory

Krasnobayev U. V. 1 2,

Candidate of Biological Sciences, Veterinary doctor

Abstract

The production culture in industrial poultry has risen to a high level and continues to improve in recent years. Profitability of production is the main task of poultry farming, as for any industrial branch. This is due to the intensification of production, a reduction in the period of sanitary preparation of premises, and a high concentration of poultry stock on a limited area. These conditions contribute to the spread of parasitic diseases and eimeriosis is the leading among them. The experiments were

1 All-Russian Scientific Research Institute for Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plant — a branch of the Federal State Budget Scientific Institution «Federal Scientific Centre VIEV» (28, Bolshaya Cheremushkinskaya st., Moscow, 117218, Russia)

2 LLC «Ratsiovet» (36, building 2, Kutuzovsky prospekt, Moscow, 121170, Russia)

carried out on 14-day-old Cobb-500 cross broiler chickens in the laboratory and vivarium of the institute in 2019. First, Virukill 260 working solutions in different concentrations, WSH buffer solution, and bird feces preservative were prepared. Virukill is a multicomposite drug in the form of a liquid, this medicine is used to disinfect and disinfestation objects of veterinary surveillance and the prevention of infectious and invasive animal diseases. Chickens of the first, second and third groups were assigned 1 ml of a suspension of Eimeria oocysts treated with 0.5; 1 and 2% solutions of the drug Virukill 260, inside using a micropipette; the fourth — also 1 ml of a suspension of Eimeria oocysts treated with a 4% phenol solution. Young animals of the fifth group were injected with sporulated Eimeria oocysts at a dose of 2000 / ml of a suspension not treated with a disinfectant (infected control); and the sixth -only 1 ml of WSH buffer solution (uninfected control). The chickens were subjected to daily clinical observations, taking into account the general condition, behavior, appetite, visible physiological changes throughout the experiment. The intensity of Virukill 260 in 0.5-, 1- and 2% concentrations against coccidium oocysts was 94.15; 97.6 and 98.17%, respectively, and phenol at 4% concentration was 88.75%. The following Eimeria species were identified: Eimeria acervulina (21.4%), E. brunetti (15.7%), E. maxima (29.6%) and E. tenella (33.3%) in broiler litter samples from the first to the fifth group.

Keywords: chickens, coccidioses, artificial infection, Virukill 260, Phenol, intensification.

Введение. Культура производства в промышленном птицеводстве за последние годы поднялась на высокий уровень и продолжает совершенствоваться. Но, несмотря на значительные темпы роста, основной задачей, как и для любой промышленной отрасли, остается экономичность производства. Часто это связано с интенсификацией производства, сокращением периода санитарной подготовки помещений, высокой концентрацией поголовья птицы на ограниченной площади. Данные условия способствуют распространению паразитарных заболеваний, и одно из первых мест приходится на эймериоз [1—2].

Следует помнить, что объекты внешней среды птицеводческих хозяйств повсеместно загрязнены ооцистами эймерий и другими инвазионными элементами, которые в зависимости от условий могут сохраняться жизнеспособными и вызывать заражение птиц в течение многих месяцев, а ооцисты — больше года. В этих условиях для реализации успешной противопаразитарной программы птицефабрикам нужны высокоэффективные средства дезинвазии, способные обеспечить надежную биозащиту поголовья [3—6]. Исходя из отмеченного, перед собой поставили задачу испытать эффективность разных концентраций препарата вирукилл 260 против спорулированных оо-цист кокцидий птиц по сравнению с базовым препаратом фенолом.

Материалы и методы. Опыты проводили с сентября по октябрь 2019 г. в лаборатории и виварии института на цыплятах-бройлерах кросса Кобб-500 14-дневного возраста. Предварительно готовили рабочие растворы Вирукилл 260 в разных концентрациях, буферный раствор WSH, средство для консервирования фекалий птиц.

Вирукилл — поликомпозиционное средство в форме жидкости для дезинфекции и дезинвазии объектов ветеринарного надзора и профилактики инфекционных и инвазионных болезней животных. Данный препарат в качестве действующих веществ содержит парах-лорметаксиленол 36% и сульфоновую кислоту, а также поверхностно-активные и вспомогательные вещества.

Биопробу ставили на 60 цыплятах 14-дневного возраста, свободных от кокцидий, при этом их корма не содержали противококцидийных препаратов. Для контроля концентрации спорулированных ооцистов кокцидий (2000 ооцист/мл) использовали камеру Мак Мастера, для разбавления — буфер WSH с таким расчетом, чтобы можно было ввести 1 мл суспензии каждому цыпленку, а для смешивания материала

— магнитный смеситель. Отобранную птицу пронумеровали, взвесили и по принципу аналогов разделили на шесть равных групп. При этом условия содержания и рацион были одинаковыми.

Цыплятам первой, второй и третьей групп задавали по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 0,5; 1 и 2%-ными растворами препарата Вирукилла 260, внутрь с помощью микропипетки; четвертой

— также по 1 мл суспензии ооцист эймерий, обработанной 4%-ным раствором фенола. Молодняку пятой группы вводили суспензию со спорулированными ооцистами эймерий в дозе 2000 на 1 мл, не обработанной дезинфектантом (зараженный контроль), а шестой — только по 1 мл буферного раствора WSH (незараженный контроль). В течение опыта за ними вели ежедневные клинические наблюдения, учитывая общее состояние, поведение, аппетит, видимые физиологические изменения.

Для выявления ооцист эймерий с 6-х по 12-е сутки от цыплят каждой группы собирали помет, взвешивали, отбирали образцы по 25 г, а затем консервировали 4%-ным раствором бихромата калия и хранили в холодильнике при 4°С. Готовый материал исследовали флотационным методом с насыщенным раствором натрия хлористого плотностью 1,18 г/см2, а для подсчета количества ооцист использовали камеру Мак Мастера.

Видовой состав эймерий идентифицировали по морфологическим признакам в соответствии с описанием А.Е. Хованских (1990) и определителю М.В. Крылова (1996) после завершения споруляции при 22—24°С.

Результаты исследований. Культуру ооцист Етепа spp., полученную в отделе паразитологии Всероссийского научно-исследовательского ветеринарного института птицеводства (г. Ломоносов), оценили как достаточно хорошую, споруляция достигала 94%.

У цыплят-бройлеров 12-суточного возраста, приобретенных в одном из птицеводческих хозяйств Московской области, на 2-й день после посадки выборочно отобрали 30 проб помета. По результатам коп-роскопических исследований все пробы были свободны от ооцист эймерий.

На 14-й день птицу заражали суспензией ооцист эймерий, обработанной дезинфектантами, что на короткое время вызывало у нее стресс. При этом у цыплят с первой по пятую группу масса тела в среднем составляла соответственно 340,5; 358,6; 366,8; 345,3 и 352,1 г. Среди птицы шестой группы, служившей незараженным контролем, данный показатель достигал 350,7 г.

Через 30 дней бройлеров взвешивали повторно. С первой по пятую группу средний прирост к исходной массе тела был соответственно 908,3; 948,5; 953,7; 786,4 и 732,4 г, а среднесуточный прирост массы — 53,4; 55,8; 56,1; 46,3 и 43,1 г. Тогда как у цыплят шестой контрольной группы данные показатели достигали соответственно 998,7 и 58,7 г.

Следует отметить, что использованный нами показатель «прирост к исходной массе тела» является интегрированным и свидетельствует, что у молодняка пятой группы инвазионный процесс, вызванный спорулированными ооцистами Етепа spp., протекал более интенсивно. В результате за время опыта прирост массы тела у них был на 26,58% ниже, чем у здоровых особей (р < 0,05). При этом цыплята первой, второй и третьей групп отставали от них на 4,43—9,03%, а четвертой — на 21,13%.

Копроскопически в помете цыплят первой, второй и третьей групп ооцист эймерий обнаруживали во все сроки исследований. Средний показатель в одной камере составил соответственно 18,98; 7,81 и 5,95 экз., а в 1 г помета — 3796, 1562 и 1190 экз. У бройлеров четвертой группы средний показатель в одной камере достигал 36,5 экз. и в 1 г помета — 7300 экз. Птица пятой группы выделяла самое большое ко-

личество ооцист эймерий (от 186 до 510 экз.). Средний показатель в одной камере составил 324,4 экз., а в 1 г помета — 64 880 экз. Цыплята шестой группы во все указанные выше сроки оставались свободными от инвазии.

Для определения интенсэффективности дезинфектантов использовали следующую формулу:

КО — КО

ИЭ =-к-^ х100,

КО

к

где ИЭ — интенсэффективность препарата, %; КОк — количество ооцист эймерий в 1 г помета цыплят контрольной группы, экз.; КОд

— количество ооцист эймерий в 1 г помета цыплят опытной группы.

Следовательно, интенсэффективность Вирукилла 260 в 0,5-; 1- и 2%-ной концентрации против ооцист кокцидий была на высоком уровне

— соответственно 94,15; 97,6 и 98,17%, а фенола в 4%-ной концентрации — 88,75%.

В пробах помета бройлеров с первой по пятую группы выделили следующие виды эймерий: Eimeria acervulina (21,4%), E. brunetti (15,7%), Е. maxima (29,6%) и E. tenella (33,3%).

При убое и осмотре цыплят-бройлеров пятой группы 30-дневного возраста у четырех выявили белые полосы в начале тонкой кишки (на два ++), характерные для Е. acervulina, у трех — точечные кровоизлияния в средней трети тонкого кишечника (на один +), обусловленные E. maxima, и у двух — воспаление и утолщение слепых отростков кишечника, а также фибринозный налет на слизистой оболочке (на два ++), свойственные для E.tenella. В четвертой группе у двух бройлеров отмечали точечные кровоизлияния в средней трети тонкого кишечника (на один +) и у трех — белые полосы в начале тонкой кишки (на один +). У одного цыпленка в первой и во второй группе обнаружили точечные кровоизлияния в средней трети тонкого кишечника (на один +).

Заключение. Интенсэффективность Вирукилла 260 в разных концентрациях против ооцист кокцидий птиц колебалась от 94,15 до 98,17%. Поскольку препарат в 1- и 2%-ной концентрации по данному показателю практически не отличался (97,6 и 98,17% соответственно), для обработки птичников в период подготовки к заселению молодняком кур мы рекомендуем его использовать в 1%-ной концентрации.

Литература

1. Акбаев М.Ш., Василевич Ф.И., Водяное А.А., Косминков Н.Е. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных. М.: Колос, 2008. 776 с.

2. Бондаренко Л.А. Эндо- и эктопаразиты ремонтного молодняка кур при напольной технологии выращивания и совершенствование мер борьбы: автореф. дис. … канд. вет. наук. М., 2015. 25 с.

3. Инструкция по применению дезинфицирующего средства «Вирукилл 260» для дезинфекции и дезинвазии объектов ветеринарного надзора и профилактики инфекционных болезней животных. М.: Рациовет, 2018. 5 с.

4. Методические рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. М.: РАСХН, 1994. 30 с.

5. Правила проведения дезинфекции и дезинвазии объектов госветнадзора. М., 2002. 74 с.

6. Сафиуллин Р.Т., Ташбулатов А.А. Кенококс клинер — новый взгляд в решении проблемы кокцидиозов // Птицеводство. 2011. № 3. С. 47—49.

References

1. Akbaev M.Sh., Vasilevich F.I., Vodyanov A.A., Kosminkov N.E. and all. Parasitology and invasive animal diseases. Moscow: Kolos, 2008. 776 р. (In Russ.)

2. Bondarenko L.A. Endo-and ectoparasites of replacement chickens at outdoor cultivation technology and improvement of control measures. autoref. dis. … cand. vet. of sciences. Moscow, 2015. 25 р. (In Russ.)

3. Instructions for use of the disinfectant «‘Virukill 260» for disinfection and disinfestation of objects of veterinary surveillance and prevention of infectious diseases of animals. Moscow: Ratsiovet, 2018. 5 р. (In Russ.)

4. Guidelines for the fight against eimeriosis and isosporosis of animals. Moscow: RAAS, 1994. 30 р. (In Russ.)

5. Rules for the disinfection and disinfestation of objects of state surveillance. Moscow, 2002. 74 р. (In Russ.)

6. Safiullin R.T., Tashbulatov A.A. Kenocox Cleaner: A New Coccidiostatic. Poultry. 2011; (3):47—49. (In Russ.)

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:
ЦЫПЛЯТА, АСКАРИДИИ (ASCARIDIA GALLI), ЯЙЦА, КОПРОСКОПИЯ, СРЕДСТВА ДЕЗИНВАЗИИ, ВИРУКИЛЛ 260, ФЕНОЛ, ИНТЕНСЭФФЕКТИВНОСТЬ, ЭЙМЕРИИ
АННОТАЦИЯ:
Лабораторные исследования по изучению овоцидных свойств комплексного средства Вирукилл 260 в разных концентрациях в опыте in vitro на дистиллированной воде показали, что интенсэффективность препарата (доля погибших яиц аскаридий Ascaridia galli) составила: при концентрации 0,5% — 95,9%; 1 и 2% — 100%. Использованный в качестве препарата сравнения фенол (4%) в условиях лаборатории показал интенсэффективность 87,8%. Проведенная биопроба на цыплятах с 16 (инокуляция яйцами аскаридий) по 51 день жизни (возраст контрольного убоя) показала, что при неполном уничтожении аскаридий в случае использования фенола и 0,5% раствора Вирукилл 260 живая масса цыплят и ее среднесуточный прирост снижаются по сравнению с интактным контролем. Концентрация препарата 1% ранее показала себя эффективной также против спорулированных ооцист эймерий, поэтому ее рекомендуется использовать на практике для подготовки птичников к заселению молодняком для их дезинфекции против экзогенных стадий как аскаридий, так и эймерий.
THE EFFICIENCY OF COMBINED PREPARATION VIRUKILL-260 AGAINST ASCARID OVA IN CHICKEN
SAFIULLIN R.T.1, CHALYSHEVA E.I.1, KRASNOBAYEV YU.V.2
1 Federal Scientific Center “All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary of K.I. Skryabin & Y.R. Kovalenko” of Russian Academy of Sciences
2 Ratsiovet Co
The ovocidic properties of different concentrations of the combined preparation Virukill-260 in compare to phenolic solution were studied in vitro on the aqueous suspension of the ova of ascarids (Ascaridia galli). The efficiency of the elimination was 95.9% for 0.5% aqueous solution of the preparation, 100% for 1 and 2% solutions; for phenolic solution (4%) it was 87.8%. The in vivo test on four treatments of chicken (universal Yubileynaya breed, 5 birds per treatment) since 16 days of age (inoculation of treatments 2-4 with non-treated ova and ova preliminary treated with phenol and Virukill-260, 0.5%, respectively; intact control treatment 1 was not inoculated) to the slaughter at 51 days of age evidenced the decreases in live bodyweight and average daily weight gains in cases of incomplete elimination of the parasites in compare to the intact control. Since the concentration of the preparation 1% was earlier found to be effective against sporulated oocysts of the Eimerias it can be recommended for the disinfection of commercial poultry houses prior to the population for the complete preliminary elimination of ascarids and Eimerias at the exogenous stages of their life cycles.
Keywords: CHICKEN, ASCARIDS (ASCARIDIA GALLI), OVA, COPROSCOPY, DISINVASIVE AGENTS, VIRUKILL-260, PHENOL, ELIMINATION EFFICIENCY, EIMERIAS

Вироцид – это высокоэффективное концентрированное средство широкого спектра действия с дезинфицирующим и антисептическим действием. Инструкция по применению Вироцида рекомендует использовать препарат для дезинфекции ветеринарных объектов и профилактики развития инфекционных заболеваний у животных. Средство оказывает быстрое противовирусное, антибактериальное и противогрибковое действие – единственное в своем роде среди всех дезинфекторов, применяемых в ветеринарии.

Состав и форма выпуска Вироцида

Препарат Вироцид выпускается в форме жидкого концентрата белесо-прозрачного или светло-коричневого оттенка. Средство имеет характерный химический запах, хорошо растворяется в воде.

В состав дезинфицирующего средства входит сложная композиция из нескольких химических веществ:

• хлорида алкилдиметилбензиламмония;
• хлорида дндецилдиметиламмония;
• альдегида глутарового;
• изопропанола;
• деривата терпентина;
• растворителя.

Вироцид расфасовывается в стеклянные емкости и пластиковые канистры объемом от 500 мл до 210 л. Дополнительно в комплект с препаратом входят мерный дозатор для точного отмеривания концентрата, опрыскиватель и специальные полоски для определения концентрации рабочего раствора. Это значительно упрощает и ускоряет его приготовление.

Механизм действия и сфера применения

Согласно инструкции по применению Вироцид эффективен относительно большинства известных вирусов, грамположительных и грамотрицательных патогенных микроорганизмов и грибковых спор, в том числе дрожжей и плесени.

Вироцид уничтожает возбудителей следующих заболеваний:

• туберкулез;
• вирус финна у птиц;
• инфекционный бурсит кур;
• инфекционная анемия у циплят;
• реовирусная инфекция;
• респираторно-ратродуктинный синдром;
• ящур;
• чума у свиней;
• цирковирусная инфекция.

Дезсредство Вироцид относится к 3 классу токсичности. При правильном приготовлении рабочего раствора оно полностью безопасно для людей, животных, а также обрабатываемых поверхностей, не вызывая их коррозию.

Способы и инструкция по применению Вироцида

Согласно инструкции по применению Вироцида это средство можно применять как для профилактической, так и для экстренной дезинфекции различных ветеринарных помещений и объектов:

• звероводческих, птицеводческих и животноводческих комплексов;
• оборудования и тары для ветеринарных комплексов;
• инвентаря и спецодежды;
• яйцескладов, инкубаторов;
• строений, территорий и оборудования пищевых, биологических и перерабатывающих предприятий;
• транспортных средств для перевозки животных;
• ветеринарных клиник, зоопарков и цирков.

Инструкция Вироцида разрешает использовать средство двумя способами – для профилактической и вынужденной дезинфекции. В первом случае обработка проводится в отсутствие животных, во втором – они могут оставаться в обрабатываемых помещениях.

Вироцид может использоваться влажным способом – для вымачивания в растворе, протирания и опрыскивания. Также препарат применяется для аэрозольной обработки ветеринарных объектов – в таком случае задействуются специальные генераторы тумана.

Профилактическая обработка

Обеззараживающая обработка ветеринарного оборудования и помещений предотвращает развитие инфекционных заболеваний у животных. Она проводится только при условии их отсутствия.

Правила проведения профилактической обработки:

1. Перед обработкой все поверхности в помещении нужно вычистить и вымыть с использованием концентрированного мыльного раствора.
2. Для приготовления рабочего раствора используется дозировка 20-50 мл препарата на 10 л немного подогретой воды.
3. Норма расхода рабочего раствора для профилактической обработки – 250 мл на 1 м. кв.
4. Вироцид можно использовать для аэрозольной обработки – раствор готовится в пропорции 20-25 мл на 10 л воды.

Вироцид для яиц и инкубационного оборудования применяется в концентрации 0,25-0,5%. Приготовленный раствор используется для обеззараживания яиц перед закладкой в инкубатор. Яйца погружаются в раствор на 20 минут.

Дезинфицирующее средство может использоваться для обеззараживания транспорта, перевозящего сельскохозяйственных животных. Перед обработкой транспортные средства нужно вымыть пенящимися моющими средствами, затем смыть его и обработать раствором Вироцида (25-50 мл на 10 л воды).

Аналогичный раствор используется для обработки ветеринарных инструментов. Их замачивают на 25-30 минут, затем ополаскивают дистиллированной водой.

Вынужденная дезинфекция

Вироцид может использовать для вынужденной, то есть экстренной дезинфекции ветеринарных помещений и оборудования. В таком случае животные могут оставаться внутри обрабатываемых помещений.

Для срочной дезинфекции используется раствор Вироцида с концентрацией 0,5%, который наносится на поверхности аэрозольным способом. Для лучшего распределения и равномерного покрытия в раствор добавляется глицерин – не больше 10% от общего объема жидкости.

Обработка помещения Вироцидом проводится с соблюдением всех мер безопасности – с использованием спецодежды, респиратора и защитных перчаток.

Аналоги Вироцида

При необходимости для дезинфекции ветеринарных помещений и оборудования могут использоваться аналоги Вироцида.

К ним относятся:

• Септол;
• Дезвур;
• Аквистин;
• Ган;
• Абсолюцид Форте;
• Максимум;
• Дезактив Универсал;
• Биалон;
• Триосепт;
• Вапусан-Форте.

Вироцид – эффективное дезинфицирующее средство, которое широко используется в сфере кулинарии. Оно применяется для объектов содержания животных с целью предупреждения инфекционных заболеваний и проведения экстренной обработки. Вироцид эффективно уничтожает патогенные и грибковые микроорганизмы, снижает риск развития болезней среди животных и улучшения общего санитарного состояния помещения без вреда для здоровья животных.

Видео-инструкция по применению Вироцида в голубятне