Среда эймса с углем инструкция по применению

Amies Transport Medium with Charcoal
Транспортная среда Амиеса с углем

M651

Транспортная среда Амиеса рекомендуется для пересылки и консервации различных биоматериалов, подлежащих микробиологическому исследованию.

 

Amies Transport Medium with Charcoal (M651), слева направо:
1. Вагинальный мазок
2. Мазок из глотки
3. Контроль

Состав**:

Ингредиенты

грамм/литр

Натрия хлорид

3,00

Калия хлорид

0,20

Кальция хлорид

0,10

Магния хлорид

0,10

Калия дигидрофосфат

0,20

Натрия гидрофосфат

1,15

Натрия тиогликалят

1,00

Уголь (активированный)

10,00

Агар-агар

4,00

Конечное значение рН (при 25°С) 7,2 ± 0,2

** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам

Приготовление:

Размешать 20,0 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Подогреть до кипения для полного растворения частиц. Разлить в необходимом количестве во флаконы с завинчивающимися крышками или в пробирки, например, по 6 мл. Стерилизовать автоклавированием при 1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить в вертикальном положении. Во время застывания несколько раз повернуть пробирки (для равномерного распределения частиц угля в среде).

Принцип и оценка результата:

Amies (1) модифицировал транспортную среду Stuart (2, 3, 4) путем замены глицерофосфата на неорганический фосфатный буфер и добавления в среду активированного угля. В данном виде среда имеет низкий редокс-потенциал (за счет присутствия тиогликолята натрия и небольшого количества агар-агара). Уголь помогает нейтрализовать вещества, токсичные для некоторых возбудителей, например, гонококков. Соли кальция, магния, калия и натрия способствуют выживанию гонококков и поддерживают жизнеспособность других бактериальных клеток.

Для отбора материала рекомендуется использовать ватные тампоны или деревянные палочки, которые опускают на одну треть глубины среды. Во время завинчивания крышки тампон продвигается ко дну пробирки со средой. Крышка должна быть плотно завинчена. Среду с материалом рекомендуется держать на холоде, но не замораживать.

Для выделения и идентификации микроорганизмов образец по возможности быстро и асептично извлекают из пробирки и делают посевы на соответствующих средах.

Контроль качества:

Внешний вид порошка:

Гомогенный сыпучий черный порошок.

Плотность готовой среды:

Образуется полужидкая среда, соответствующая по плотности 0,4%-ному агаровому гелю.

Цвет и прозрачность готовой среды:

В пробирках формируется черный опалесцирующий столбик геля.

Кислотность среды:

При 25°С водный раствор (2% вес/об) имеет рН 7,2 ± 0,2.

Культуральные свойства:

Ростовые характеристики референс-штаммов через 18-24 ч при 35°С после подращивания на триптон-соевом агаре (М290).

Штаммы микроорганизмов (АТСС)

Выделение

Escherichia coli (25922)

Обильное

Klebsiella pneumoniae (13883)

Обильное

Pseudomonas aeruginosa (9027)

Обильное

Salmonella typhi (6531)

Обильное

Shigella flexneri (12022)

Обильное

Staphylococcus aureus (25923)

Обильное

Vibrio cholerae (15748)

Обильное

Условия и сроки хранения:

Порошок хранить при температуре ниже +25°С. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2…8°С.

Источник

Suggest us how to improve StudyLib

(For complaints, use

another form
)

Your e-mail

Input it if you want to receive answer

Rate us

1

2

3

4

5

Источник
Транспортная среда Эймса
с древесным углем

Amies Transport Medium w/Charcoal

 Кат. № 1535

Фасовка 500 г. Срок годности 4 года.
Хранить при температуре 20°С

Среда для транспортировки и сохранения микробиологических проб; рекомендуется для мазков из горла, влагалища и ран, а также для выживания Neisseria gonorrhoeae

Формула в граммах на литр

Активированный уголь 10,0 Хлорид натрия 3,0

Na2HPO4 1,1 Тиогликолят натрия 1,0

Хлорид калия 0,2 KH2PO4 0,2

Хлорид кальция 0,1 Хлорид магния 0,1

Бактериологический агар № 2 7,5

Конечная величина pH 7,3 ± 0,2 при 25°C

Приготовление

Развести 23,2 г среды в 1 литре дистиллированной воды. Тщательно перемешать и нагреть. Часто помешивая, довести до кипения. Кипятить в течение минуты до полного растворения. Разлить в пробирки и стерилизовать 15 минут при 121°C. Поддерживать гомогенное распределение угля по всей среде, переворачивая пробирки по мере их осты­вания. Готовая среда должна быть черного цвета и храниться при 2–8°C.

Использование

Транспортная среда Эймса с древесным углем используется для сбора, транспортировки и сохранения микробиологических образцов. Ее состав рассчитан на поддержание жизнеспособности микроорганизмов без существенного увеличения роста. Среда не является питательной, содержит фосфатный буфер, полужидкая.

Эймс (Amies, 1967) разработал транспортную среду с углем после того, как доказал, что коэффициент выживания N. gonorrhoeae увеличивается при использовании угольных тампонов. Эймс решил проблему удаления угля из тампонов, включив уголь в состав среды. Транспортная среда Эймса рекомендуется для мазков из горла, влагалища и ран.

Древесный уголь, входящий в состав среды, нейтрализует жирные кислоты, токсичные для микроорга­низмов. Хлоридные соли поддерживают осмотический баланс, фосфаты выступают в качестве буферной сис­темы; тиогликолят натрия подавляет окислительные процессы и поддерживает восстановительные условия среды.

Поместить инокулированные стерильные тампоны в верхнюю треть транспортной среды в транспортиро­вочном контейнере; отломить выступающую часть стрежня тампона и плотно завинтить крышку. Отправить в лабораторию в течение 24 часов для анализа культуры. До отправки образцы можно хранить в холодильнике.

Микробиологический тест

Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах, хранившихся при различных температурах (4°C и комнатная температура) до 72 часов.

Микроорганизмы Восстановление при 4° Восстановление при 25°
Neisseria gonorrhoeae ATCC 19424 ≥50% ≥50%
Brucella abortus ATCC 4315 ≥50% ≥50%
Sterptococcus pneumoniae ATCC 6303 ≥50% ≥50%
Shigella flexneri ATCC 12022 ≥50% ≥50%
Salmonella typhi ATCC 6539 ≥50% ≥50%

Amies Transport Medium with Charcoal
Транспортная среда Амиеса с углем

M651

Транспортная среда Амиеса рекомендуется для пересылки и консервации различных биоматериалов, подлежащих микробиологическому исследованию.

 

Amies Transport Medium with Charcoal (M651), слева направо:
1. Вагинальный мазок
2. Мазок из глотки
3. Контроль

Состав**:

Ингредиенты

грамм/литр

Натрия хлорид

3,00

Калия хлорид

0,20

Кальция хлорид

0,10

Магния хлорид

0,10

Калия дигидрофосфат

0,20

Натрия гидрофосфат

1,15

Натрия тиогликалят

1,00

Уголь (активированный)

10,00

Агар-агар

4,00

Конечное значение рН (при 25°С) 7,2 ± 0,2

** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам

Приготовление:

Размешать 20,0 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Подогреть до кипения для полного растворения частиц. Разлить в необходимом количестве во флаконы с завинчивающимися крышками или в пробирки, например, по 6 мл. Стерилизовать автоклавированием при 1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить в вертикальном положении. Во время застывания несколько раз повернуть пробирки (для равномерного распределения частиц угля в среде).

Принцип и оценка результата:

Amies (1) модифицировал транспортную среду Stuart (2, 3, 4) путем замены глицерофосфата на неорганический фосфатный буфер и добавления в среду активированного угля. В данном виде среда имеет низкий редокс-потенциал (за счет присутствия тиогликолята натрия и небольшого количества агар-агара). Уголь помогает нейтрализовать вещества, токсичные для некоторых возбудителей, например, гонококков. Соли кальция, магния, калия и натрия способствуют выживанию гонококков и поддерживают жизнеспособность других бактериальных клеток.

Для отбора материала рекомендуется использовать ватные тампоны или деревянные палочки, которые опускают на одну треть глубины среды. Во время завинчивания крышки тампон продвигается ко дну пробирки со средой. Крышка должна быть плотно завинчена. Среду с материалом рекомендуется держать на холоде, но не замораживать.

Для выделения и идентификации микроорганизмов образец по возможности быстро и асептично извлекают из пробирки и делают посевы на соответствующих средах.

Контроль качества:

Внешний вид порошка:

Гомогенный сыпучий черный порошок.

Плотность готовой среды:

Образуется полужидкая среда, соответствующая по плотности 0,4%-ному агаровому гелю.

Цвет и прозрачность готовой среды:

В пробирках формируется черный опалесцирующий столбик геля.

Кислотность среды:

При 25°С водный раствор (2% вес/об) имеет рН 7,2 ± 0,2.

Культуральные свойства:

Ростовые характеристики референс-штаммов через 18-24 ч при 35°С после подращивания на триптон-соевом агаре (М290).

Штаммы микроорганизмов (АТСС)

Выделение

Escherichia coli (25922)

Обильное

Klebsiella pneumoniae (13883)

Обильное

Pseudomonas aeruginosa (9027)

Обильное

Salmonella typhi (6531)

Обильное

Shigella flexneri (12022)

Обильное

Staphylococcus aureus (25923)

Обильное

Vibrio cholerae (15748)

Обильное

Условия и сроки хранения:

Порошок хранить при температуре ниже +25°С. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2…8°С.

  • ИНВИТРО
  • Врачам

Инструкции по правилам сбора биологического материала для микробиологических исследований

Общие требования

  1. Проведение исследования и сбора материала до начала лечения антибиотиками, антисептиками, противогрибковыми препаратами.
  2. Использование расходных материалов (контейнеров, пробирок, флаконов с питательными средами и транспортных систем в пробирках, сухих стерильных тампонов, направительных бланков), выдаваемых лабораторией ИНВИТРО.
  3. Правильное хранение выданных транспортных сред (в холодильнике) и согревание до комнатной температуры перед использованием (примерно 30 минут).
  4. Правильный выбор транспортной среды для каждого вида исследования. Информацию об используемых транспортных средах и других расходных материалах смотрите в разделе «Описание тестов».
  5. Обязательная маркировка пробирок, контейнеров, флаконов и транспортных сред с указанием Фамилии И.О., даты рождения, даты и времени взятия материала и локализации, откуда получен образец.
  6. При оформлении направительного бланка заполнение всех граф, с указанием локализации материала и номера теста. Информация на бланке и материале должны совпадать, иначе материал в работу не будет браться.
  7. Соблюдение сроков и режима хранения проб, полученных для исследований.

Информация для гастроэнтерологов

ПРАВИЛА СБОРА КАЛА ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА (ДИСБАКТЕРИОЗ)

  1. Все обследуемые пациенты за 1-3 дня до взятия пробы должны находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике и молочно-кислые продукты, также алкоголь, антибиотики и бактерийные препараты (содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки и т.д.).
  2. Материалом служит кал после естественной дефекации, который собирают в чистый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой.
  3. Не рекомендуется собирать кал из унитаза.
  4. Собирают кал на чистую поверхность, в качестве которой может быть использован чистый новый лист (пакет) из полиэтилена или бумаги (этот способ является предпочтительным).
  5. При использовании судна, его предварительно хорошо промывают с мылом и губкой, ополаскивают многократно водопроводной водой, а потом обдают кипятком и остужают.
  6. Кал берут преимущественно из средней порции специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного контейнера, в количестве не более 1/3 от объема контейнера. Не наполняйте контейнер доверху. Тщательно закройте крышку.
  7. Срок и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.
  8. Для правильной оценки результатов рекомендуется проведение 2-3-кратных исследований с интервалом 1-2 дня.

ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА НА ПАТОГЕННУЮ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННУЮ МИКРОФЛОРУ

  1. Взятие проб кала должно осуществляться на ранних этапах болезни, пока патогенные микробы содержатся в материале в большом количестве.
  2. Для сбора кала пациенту выдается контейнер с крышкой и ложечкой.
  3. Если пациент собирает кал дома, ему нужно выдать инструкцию (см. выше), где изложены правила сбора и предупредить о том, что материал должен быть доставлен в лабораторию, как можно быстрее.
  4. Если кал собирается в условиях медицинского центра и доставка не может быть осуществлена в кратчайший срок, для сохранности материала используют транспортную систему со средой Cary Blair. Тампон погружают в фекалии поочередно в нескольких местах, после чего он погружается в пробирку с транспортной средой. Нет необходимости переносить кусочки кала.
  5. Если кал собираются исследовать только на золотистый стафилококк или грибы, то в качестве транспортной среды может быть использована среда Эймс с углем.
  6. При исследовании кала на ротавирус и Clostridium difficile жидкий кал доставляется только в контейнере, а не на тампоне.
  7. Хранение кала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. 
  8. Кал в стерильном контейнере с момента его получения до переноса в транспортную среду может храниться при комнатной температуре не более 2-х часов.

ИССЛЕДОВАНИЕ РЕКТАЛЬНОГО СОДЕРЖИМОГО

  1. Перед взятием мазка проводится тщательный туалет с мылом и водой области вокруг анального отверстия для снижения контаминации пробы.
  2. Осторожно вводят тампон на 2,5 см вглубь анального сфинктера и аккуратно вращают его в течение 10 секунд для получения материала с анальных складок, после чего помещают в пробирку с транспортной средой Cary Blair.
  3. Если цель исследования посев на гонорею, мазок берут аналогичным образом в транспортную среду Эймс с углем.
  4. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЖЕЛЧЬ

  1. Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки с плотно закрывающимися крышками.
  2. Полученные порции желчи желательно доставить в лабораторию не позднее 1-2 ч от момента взятия.
  3. При невозможности доставить материал в указанный срок, допускается хранение.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОМЫВНЫХ ВОД, ЛАВАЖА (ИЗ ЖЕЛУДКА)

  1. Материал собирается рано утром, до еды, пока пациент еще в постели.
  2. Вводят назо-гастральный зонд через нос в желудок.
  3. Желудок промывают 25-50 мл охлажденной дистиллированной водой.
  4. Далее жидкость отсасывается и помещается в стерильный контейнер. Крышку плотно закрывают.
  5. Аккуратно, следуя правилам, удаляют зонд.
  6. Материал может храниться не более 2-х часов при комнатной температуре и не более 24-х часов при 2-8С.

АБДОМИНАЛЬНАЯ И ПЕРИТОНЕАЛЬНАЯ ЖИДКОСТИ

  1. 1-2% раствором йода дезинфицируют кожу в области манипуляции.
  2. Посредством чрезкожной пункции (или во время операции) жидкость набирается в шприц.
  3. Важно набрать большой объем жидкости (сколько возможно)! Полученную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают.
  4. Допустимо использовать для транспорта и культивирования флаконы для гемокультур, тогда соблюдают те же правила, что и при взятии крови (в этом случае следует заказать исследование № 438).
  5. Материал хранят в тепле и доставляют в лабораторию силами заказчика при температуре 35С.

ПРАВИЛА СБОРА ГРУДНОГО МОЛОКА

  1. Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
  2. Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т.к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер с красной крышкой, старайтесь при этом не касаться краёв контейнера телом.
  3. Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер. После сцеживания плотно закройте крышку, стараясь не дотрагиваться краев контейнера руками.
  4. Промаркируйте каждый контейнер, указав фамилию, инициалы, дату рождения, на каждом контейнере необходимо указать: «правая молочная железа» или «левая молочная железа».
  5. Молоко до отправки в лабораторию должно храниться в холодильнике не более 24-х часов.

Информация для гинекологов

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У ЖЕНЩИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ

  1. Используйте только новые стекла с матовым краем, которые выдает лаборатория ИНВИТРО (или, если у вас в нужный момент не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые, проверьте, чтоб они были чистыми).
  2. Перед тем, как взять мазок очень важно убрать из влагалища избыток выделений и слизи сухой стерильной марлевой салфеткой (т.к. там содержатся разрушенные клетки и лейкоциты, детрит и мертвые микробные клетки). При несоблюдении этого требования описанная нами микроскопическая картина введёт вас в заблуждение, т.к. ядра эпителиальных клеток и детрит встречаются при таком патологическом состоянии, как цитолитический вагиноз, которого на самом деле может и не быть, а часть микробов не удастся правильно идентифицировать, в связи с тем, что они потеряют способность правильно воспринимать красители.
  3. Нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем.
  4. Маркируйте стекло на противоположной от мазка стороне.
  5. Отметьте на стекле локализацию каждого мазка, если их наносится на стекло более одного (например «С», «V», «U»).
  6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения.
  7. Дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковать перед отправкой.
  8. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ ЖЕНЩИН

  1. Перед сбором мочи подготовьте 6 — 10 чистых ватных шариков, сосуд с теплым мыльным раствором (пользуйтесь обычным туалетным мылом), сосуд с теплой кипяченой водой и контейнер для сбора мочи (крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой).
  2. Вымойте руки с мылом.
  3. Удобно расположитесь на унитазе и разведите колени как можно шире.
  4. Вымойте область наружных половых органов, последовательно меняя 4 ватных шарика, смоченных в мыльном растворе. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки.
  5. Промойте намыленный участок с помощью двух и более ватных шариков, смоченных в теплой кипяченой воде. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки.
  6. Во избежание попадания в мочу выделений из влагалища, во время сбора мочи женщинам, живущим половой жизнью, рекомендуется ввести во влагалище тампон.
  7. Снимите крышку с контейнера и возьмите его в руку, стараясь не касаться краев. Приготовьтесь собрать мочу.
  8. Удерживая половые губы разведенными, выпустите немного мочи в унитаз, приостановите мочеиспускание, а затем, подставив контейнер под струю мочи, наполните его до половины объема. Постарайтесь не прикасаться контейнером к телу.
  9. Открутить крышку пробирки «Уро-тампон» и извлечь аппликатор с губкой.
  10. Опустить губчатый тампон в образец мочи на 5 секунд, пока губка полностью не пропитается мочой (вар.1) или непосредственно помочиться на тампон (вар. 2).
  11. Вернуть аппликатор с тампоном в пробирку и плотно ее закрыть.
  12. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Внимание! Губку, находящуюся в пробирке не отжимать.
  13. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ

  1. Перед взятием мазка на посев проводится туалет наружных половых органов для снижения контаминации пробы с помощью стерильных салфеток и дистиллированной воды.
  2. Материал собирают не ранее, чем через 2 часа после мочеиспускания.
  3. Для стимуляции выделений нежно массируют уретру, отделяемое собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной среды Эймс с углем.
  4. Если отделяемое получить не удается, в уретру вводят стерильный тампон на глубину 1-2 см, аккуратно вращают его в течение 10 сек., вынимают, помещают в транспортную среду Эймс с углем.
  5. Для исследования на микоплазмы транспортной средой является флакончик с бульоном светло-желтого цвета, на трихомонады флакончик с транспортной средой для трихомонад. Для сбора материала используют сухой тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке.
  6. Материал хранится, помещенный в транспортную среду, в зависимости от вида исследования, сроки и условия хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ВУЛЬВЫ, ПРЕДДВЕРИЯ ВЛАГАЛИЩА

  1. Материал берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем.
  2. При воспалении бартолиниевых желез производят их пункцию. При вскрытии абсцесса железы гной берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, после чего его погружают в пробирку со средой.
  3. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ВЛАГАЛИЩА

  1. Материал берут до проведения мануальных исследований.
  2. Зеркало и подъемник вводят во влагалище, стерильной салфеткой убирают избыток выделений и слизи. Материал собирают из заднего свода или с патологически измененных участков стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем.
  3. При исследовании на уреа/микоплазмы для сбора материала используют сухой тампон, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. После того, как материал получен, его суспендируют во флаконе для микоплазм.
  4. При посеве на трихомонады для сбора материала используют сухой тампон, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. После того, как материал получен, его суспендируют во флаконе с транспортной средой для трихомонад.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ШЕЙКИ МАТКИ

  1. Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть и убирают избыток выделений и слизи стерильной марлевой салфеткой или ватным шариком, смоченными стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Далее вытирают салфеткой избыток влаги.
  2. Тонкий стерильный тампон (входящий в состав транспортной системы) аккуратно вводят в цервикальный канал и вращают 10 сек., не касаясь стенок влагалища.
  3. Для посева можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала. В этом случае материал переносится на тампон и погружается в пробирку с транспортной средой Эймс с углем.
  4. При исследовании на уреа/микоплазмы и трихомонады материал берут так же, как описано выше.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СОДЕРЖИМОЕ ПОЛОСТИ МАТКИ

  1. Используют специальные инструменты типа шприца-аспиратора, имеющего на зонде покрытие.
  2. При введении зонда в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки.
  3. Закрывают наружную оболочку и выводят зонд из матки.
  4. Материал из шприца помещают на тампон и погружают в транспортную среду Эймс с углем.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для урологов

 ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У МУЖЧИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ

  1. Используйте только новые стекла с матовым краем, которые выдает лаборатория ИНВИТРО (или, если в нужный момент у вас не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые и чистые).
  2. Перед тем, как взять мазок из уретры очень важно провести гигиеническую обработку кожи головки полового члена с помощью мыла и воды для уменьшения контаминации мазка посторонней флорой. После обработки осушить головку полового члена с помощью стерильной марлевой салфетки.
  3. С помощью специальных инструментов, используемых в вашем медицинском центре, соберите отделяемое уретры, нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем.
  4. Если исследуется секрет простаты, мазок наносится на стекло, распределяется равномерно тонким слоем.
  5. Обязательно дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковывать перед отправкой.
  6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ МУЖЧИН
Для анализов №440, №444

  1. Вымойте руки с мылом.
  2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
  3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
  5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Если целью исследования является выявление уреа/микоплазм, то объем мочи должен быть не менее 40-50 мл (это почти полный контейнер).
  6. Тщательно закройте контейнер крышкой.
  7. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Для анализов №№ 441, 442, 443

  1. Вымойте руки с мылом.
  2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
  3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
  5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Объем мочи должен быть не менее 1/3 контейнера.
  6. Открутить крышку пробирки «Уро-тампон» и извлечь аппликатор с губкой.
  7. Опустить губчатый тампон в образец мочи на 5 секунд, пока губка полностью не пропитается мочой (вар.1) или непосредственно помочиться на тампон (вар. 2).
  8. Вернуть аппликатор с тампоном в пробирку и плотно ее закрыть.
  9. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Внимание! Губку, находящуюся в пробирке не отжимать.
  10. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ

  1. Материал собирают не ранее, чем через 2-3 часа после мочеиспускания.
  2. Перед взятием мазка из уретры, кожу обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Высушивают стерильной салфеткой.
  3. В уретру на глубину 2-4 см аккуратно вводят стерильный тампон на тонком аппликаторе, входящий в состав транспортной системы Эймс с углём. Нежно, но интенсивно вращают им внутри в течение 10 сек., после чего тампон помещают в пробирку со средой.
  4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы или трихомонады, для сбора материала используется тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. Клетки и слизь с тампона тщательно суспендируют в соответствующий флакон с жидкой средой (просьба, не путать флаконы для трихомонад и микоплазм).
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СЕКРЕТ ПРОСТАТЫ

  1. Перед сбором материала проводят тщательный туалет наружных половых органов с помощью мыла и кипяченой воды.
  2. Проводят ручной массаж простаты через прямую кишку.
  3. Материал собирают в стерильную пробирку, а затем используют транспортную систему со средой Эймс с углем. Пропитайте жидкостью стерильный тампон и поместите его в пробирку с транспортной средой.
  4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
  5. При посеве на трихомонады секрет простаты сначала собирается в стерильный контейнер с крышкой, а затем аккуратно переливается во флакончик с транспортной средой для трихомонад в количестве 0,5-1,0 мл. Можно сразу собрать секрет простаты во флакончик.
  6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ЯЗВЫ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА

  1. Очищают поверхность язвы тампоном, смоченным физиологическим раствором, корочки удаляют.
  2. Производят соскоб язвы до появления серозной жидкости.
  3. Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения. (Следует избегать кровоточивости).
  4. Надавливают у основания язвы до появления серозной жидкости.
  5. Аспирируют выделившуюся жидкость шприцом с тонкой иглой.
  6. Материал из шприца переносят на тампон, который потом погружают в пробирку со средой Эймс с углем.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА СПЕРМЫ

  1. Перед сбором материала тщательно вымойте руки с мылом, а затем проведите туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушите стерильной салфеткой.
  2. Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  3. Материал получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер. Если объем полученной спермы очень мал, можно использовать транспортную систему со средой Эймс с углем. Для этого пропитайте жидкостью стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы и поместите его в пробирку со средой. Возможна доставка материала в контейнере.
  4. Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта (во избежание вытекания материала).
  5. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
  6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. При культуральном исследовании на влагалищную трихомонаду предпочтительней исследовать секрет простаты, который собирают в стерильную пробирку и переносят во флакон со средой для транспортировки и культивирования трихомонад. Хранение и доставка осуществляется силами заказчика при температуре 35С в наиболее короткие сроки. При исследовании на гонорею материал хранится и доставляется заказчиком самостоятельно в наиболее короткие сроки при температуре 35С. Срок хранения материала в транспортной среде не более 5-6 часов.

Информация для отоларингологов

МАЗКИ ИЗ ЗЕВА

Материал не следует брать при воспаленном надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей.

  1. Мазок берут натощак или через 2-3 ч после еды и питья.
  2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
  3. Аккуратно прижимают язык шпателем, стерильным тампоном от транспортной системы Эймс с углем проводят между дужками миндалин, по язычку и задней стенке глотки, не касаясь губ, щек и языка. При наличии гнойных наложений мазок желательно брать на границе здоровых и пораженных тканей (т.к. именно там находится наибольшее количество микробов).
  4. Тампон погружают в пробирку с транспортной средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ НОСА

  1. Для обоих носовых ходов используется один тампон с транспортной средой Эймс.
  2. Перед взятием мазков не надо промывать носовые ходы.
  3. Вводят тампон в носовой ход на глубину 2-2,5 см на уровне носовой раковины.
  4. Прижать тампон крылом носа к носовой перегородке и вращательными движениями тампона собирают материал со слизистой носа.
  5. Аналогичным образом берут материал в другом носовом ходе.
  6. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
  7. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ РОТОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА КОКЛЮШ

  1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья.
  2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
  3. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду с тампоном на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120˚, что необходимо для достижения области ротоглотки. Вскрыть упаковку с транспортной средой со стороны крышек, достать пробирку, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться. Держать за крышку.
  4. Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят за корень языка вниз и проводят стерильным тампоном по задней поверхности ротоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку и слизистым щек.
  5. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
  6. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ НОСОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА МЕНИНГОКОКК

  1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья.
  2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
  3. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду с тампоном на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120˚, что необходимо для достижения области носоглотки. Вскрыть упаковку с транспортной средой со стороны крышек, достать пробирку, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться. Держать за крышку.
  4. Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят под мягкое нёбо за маленький язычок вверх и проводят стерильным тампоном по передней поверхности носоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку или слизистым щек.
  5. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
  6. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АСПИРАТ ИЗ ПАЗУХ

  1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи, соблюдая правила асептики.
  2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
  3. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЖИДКОСТЬ ПРИ ТИМПАНОЦЕНТЕЗЕ

  1. Очищают наружный слуховой проход слабым раствором антисептика.
  2. Если барабанная перепонка не нарушена, ушной канал промывают мыльным раствором, ополаскивают, высушивают, и, используя аспирационную технику, набирают жидкость в шприц. Далее аспират из шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
  3. При прободении барабанной перепонки экссудат собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, используя слуховое зеркало.
  4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ИЗ НАРУЖНОГО СЛУХОВОГО ПРОХОДА.

  1. Обрабатывают кожу 70% спиртом и промывают физиологическим раствором.
  2. При помощи влажного (смоченного стерильным физиологическим раствором) тампона из ушного канала удаляют соринки и корки.
  3. Материал из очага берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, интенсивно вращая им в наружном слуховом проходе (но осторожно, чтоб не повредить барабанную перепонку).
  4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для пульмонологов

ПРАВИЛА СБОРА МОКРОТЫ

  1. Исследованию подлежит утренняя мокрота, выделяющаяся во время приступа кашля.
  2. Перед откашливанием необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости. Следите за тем, чтобы в контейнер не попала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке!).
  3. Выделившуюся мокроту собирают в стерильный контейнер с красной крышкой.
  4. Крышку плотно закрывают, чтобы материал не вытек.
  5. Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства.
  6. Для микроскопического исследования мазок на стекле делать не надо, мокроту присылают в контейнере.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ТРАХЕОБРОНХИАЛЬНЫЕ СМЫВЫ

  1. Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности ее выделить естественным путем.
  2. Гортанным шприцем в трахею вводят не более 5 мл стерильного физиологического раствора с последующим его отсасыванием в стерильную пробирку с желтой крышкой.
  3. Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа.
  4. Смывную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают.
  5. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПЛЕВРАЛЬНАЯ ЖИДКОСТЬ

  1. Кожу перед пункцией обрабатывают 2% раствором йода, а затем 70% этиловым спиртом.
  2. Делают прокол и собирают жидкость в стерильную пробирку с соблюдением правил асептики.
  3. Во время получения материала участвуют двое, один пунктирует, другой открывает крышку пробирки в нужный момент, стараясь не прикасаться руками к верхнему краю пробирки и внутренней поверхности крышки.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для окулистов

ОТДЕЛЯЕМОЕ КОНЬЮНКТИВЫ

  1. Материал для посева забирается утром до умывания.
  2. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем. Гной собирают с внутренней поверхности нижнего века движением от наружного к внутреннему углу глазной щели.
  3. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).
  4. При скудном отделяемом тампон предварительно смачивают стерильным физиологическим раствором или стерильной дистиллированной водой. Избыток влаги отжимают о внутреннюю поверхность ёмкости, далее собирают материал, как описано в пункте 1.
  5. Хранение тампона, помещенного в транспортную среду, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.  

СОСКОБ С РОГОВИЦЫ

  1. В каждый глаз закапывается местный анестетик.
  2. При помощи стерильной лопаточки делают соскоб с язвы или другого образования.
  3. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность.
  4. Из полученного материала делают мазок на стекле для микроскопического исследования, для этого используют тампон без транспортной среды в индивидуальной стерильной упаковке.
  5. На посев берут мазок тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем.
  6. Хранение тампона, помещенного в транспортную среду, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. 

Информация для хирургов

ОТДЕЛЯЕМОЕ ПОВЕРХНОСТНЫХ РАН

  1. Поверхность кожи вокруг раны обрабатывают ватным тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом или другим антисептиком.
  2. После высыхания дезинфектанта, стерильной марлевой салфеткой удаляют детрит, некротические массы, гной.
  3. Отделяемое из раны для посева берут с помощью тампона, входящего в состав транспортной системы Эймс с углем, для микроскопического исследования — с помощью тампона без среды, находящегося в индивидуальной стерильной упаковке. Материал на тампон собирают круговыми вращательными движениями от центра к периферии пораженного участка в течение 5-10 секунд (во время взятия материала не касаются окружающих рану тканей, кожи и слизистых) и погружают в пробирку с транспортной средой.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СОДЕРЖИМОЕ ГЛУБОКИХ РАН И АБСЦЕССОВ

  1. Удалите поверхностный экссудат салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом.
  2. После дезинфекции поверхности раны и высыхания дезинфектанта врач с помощью шприца и иглы берет аспират из глубины раны. Если имеется везикула, берется жидкость и клетки у основания дефекта.
  3. Если первоначально аспират взять не удалось, подкожно вводят стерильный физиологический раствор и повторно пытаются взять аспират.
  4. Далее аспират помещают в стерильную пробирку.
  5. Стерильный тампон от транспортной системы пропитывают полученной жидкостью и погружают в пробирку со средой.
  6. При взятии материала во время операции отсылают вместе с аспиратом и кусочек ткани, образующей стенку абсцесса. Его можно поместить с помощью этого же тампона вглубь транспортной среды в ту же пробирку.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЦЕЛЛЮЛИТ

  1. Поверхность кожи над местом наибольшего воспаления обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом.
  2. С помощью иглы и шприца аспирируют содержимое из мягких тканей, далее через эту же иглу набирают в шприц небольшое количество стерильного физиологического раствора.
  3. Жидкостью из шприца пропитывают тампон, который погружают в транспортную среду Эймс с углем, часть жидкости (несколько капель) можно добавить в пробирку.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРОЛЕЖНИ, ЯЗВЫ

  1. Поверхность пролежня (язвы) и кожу вокруг обрабатывают стерильным физиологическим раствором.
  2. Материал получают путем энергичного надавливания тампоном на дно язвы. Поверхностный экссудат для исследования непригоден.
  3. Тампон с полученным материалом помещают в транспортную среду Эймс с углем.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ КРОВИ ПРИ ПОСЕВЕ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ

  • Перед процедурой взятия крови выньте флаконы для гемокультур из холодильника.
  • Для взрослых и детей (весом > 40 кг) используют 2 флакона на один анализ с оранжевой и серой пластиковыми крышками.
  • Для детей раннего возраста, чей вес менее 40 кг — 1 флакон с розовой крышкой (педиатрический).
  • Флаконы должны быть согреты до комнатной температуры. Для ускорения процесса можно поместить флаконы в ёмкость с тёплой (но не горячей) водой.
  • Перед взятием крови отломить у флаконов пластиковые крышки и для дезинфекции обработать поверхность внутренних крышек салфеткой, смоченной 70% этиловым спиртом в течение 1 минуты.
  1. Кожу над пунктируемой веной тщательно обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем 1-2% настойкой йода 30 сек.
  2. После высыхания обработанного участка, не прикасаясь руками к обработанной поверхности, производят венепункцию.
  3. Для взятия крови используется та же технология, что и при взятии крови в пробирку (в нашем случае, узкое и длинное горлышко флакона вставляется в холдер вместо пробирки и прокалывается резиновая крышка).
  4. Флаконы, как и пробирки, имеют отрицательное давление, поэтому кровь набирается до тех пор, пока давление не станет равным атмосферному, что соответствует ~ 10 мл. В педиатрическом флаконе отрицательное давление соответствует объёму 3-5 мл.
  5. Флаконы должны быть промаркированы с указанием фамилии, инициалов, даты рождения и даты взятия материала.
  6. После завершения процедуры йод удаляют с кожи салфеткой с 70% этиловым спиртом и область прокола закрывают лейкопластырем. Попросите пациента подержать руку согнутой в локтевом сгибе для того, чтоб предотвратить образование гематомы. В случаях остро возникшего сепсиса следует проводить 2-3-кратные исследования с интервалом 30-60 мин. Кровь на исследование рекомендовано брать во время подъема температуры, а не на высоте лихорадки.

Информация для стоматологов

СОДЕРЖИМОЕ ИЗ ЗУБО-ДЕСНЕВОГО КАРМАНА

  1. Осторожно промойте десневой карман и прилегающую поверхность зуба стерильным физиологическим раствором, удалив слюну, остатки пищи и зубной налёт.
  2. Осторожно удалите с помощью инструментов участок воспаленной ткани и, соблюдая правила асептики, перенесите его в пробирку с питательным бульоном. Энергично перемешайте содержимое с помощью тампона, входящего в транспортную систему со средой Эймс с углем так, чтобы он хорошо пропитался жидкостью. Далее тампон поместите в пробирку со средой.
  3. Если получить биоптат не удается, то энергично потрите стерильным бумажным или другим подходящим по размеру аппликатором (или зубной нитью) в десневом кармане. Стерильными ножницами отрежьте исследуемый край аппликатора над открытой пробиркой с бульоном, так чтобы он попал в неё. Далее действуйте, как описано выше. Для исследования непригоден весь аппликатор, т.к. часть его контаминирована посторонней флорой с перчаток персонала.
  4. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. 

АСПИРАТ ИЗ ВЕРХНЕ-ЧЕЛЮСТНОЙ ПАЗУХИ

  1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи.
  2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем.
  3. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АБСЦЕСС (ОТКРЫТЫЙ)

  1. Удалите поверхностный экcсудат салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором.
  2. Удалите жидкость из глубины.
  3. Энергично прикасаясь, соберите тампоном исследуемый материал или удалите кусочек с приподнятого края абсцесса.
  4. Поместите тампон в пробирку с транспортной средой.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АБСЦЕСС ЛИМФОУЗЛА

  1. Обработайте поверхность кожи (слизистой) салфеткой, смоченной 70% спиртом, высушите стерильной марлевой салфеткой.
  2. Проколите стенку абсцесса с помощью иглы и шприца и наберите содержимое, соблюдая правила асептики, перенесите на тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем.
  3. Далее поместите тампон в транспортную среду.
  4. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

БУККАЛЬНЫЙ ЦЕЛЛЮЛИТ

  1. Промойте поверхность слизистой над местом наибольшего воспаления салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором.
  2. С помощью иглы и шприца попробуйте аспирировать содержимое из мягких тканей, далее наберите в шприц через эту же иглу небольшое количество стерильного физиологического раствора.
  3. Перенесите жидкость из шприца в стерильную сухую пробирку.
  4. Вскройте упаковку с транспортной средой Эймс, пропитайте тампон собранной в пробирку жидкостью и поместите его в пробирку со средой.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЯЗВА ПРИ НЕКРОТИЧЕСКОМ СТОМАТИТЕ

  1. Обработайте поверхность стерильным физиологическим раствором.
  2. Если получить биоптат невозможно, энергично потрите тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс, о дно язвы.
  3. Поместите тампон или биоптат в транспортную среду.
  4. Поверхностный экссудат для исследования не пригоден.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.
Источник

Содержание

Что такое транспортная среда Эмиса?

  • Транспортная среда Эмиса — это специализированная транспортная среда, используемая для транспортировки и сохранения микробиологических образцов. Это полутвердая непитательная среда, предназначенная для поддержания жизнеспособности патогенных организмов во время транспортировки из места сбора в лабораторию.
  • Основная цель транспортной среды — обеспечить подходящую среду для выживания микроорганизмов, ингибируя при этом ферментативные реакции саморазрушения и реакции токсического окисления. Транспортная среда Эмиса, разработанная путем модификации транспортной среды Стюарта, предлагает несколько преимуществ по сравнению с исходной формулой.
  • Одной из модификаций транспортной среды Эмиса является замена глицерофосфата неорганическим фосфатным буфером. Это изменение помогает создать уменьшенную среду в среде, что имеет решающее значение для выживания некоторых микроорганизмов. Кроме того, в среду включено небольшое количество агара, что еще больше способствует ее полутвердой консистенции.
  • Древесный уголь — еще один ключевой компонент, добавленный в транспортную среду Amies. Древесный уголь служит для нейтрализации материалов, которые могут быть токсичными для чувствительных патогенов, таких как Neisseria gonorrhoeae. Удаляя потенциальные токсины, древесный уголь помогает поддерживать жизнеспособность этих патогенов во время транспортировки.
  • Присутствие солей кальция, магния, калия и натрия в транспортной среде Эмиса способствует выживанию бактериальных клеток, особенно гонококковых клеток. Эти соли также помогают регулировать проницаемость бактериальных клеток.
  • Фосфаты включаются в среду для буферизации ее pH и поддержания стабильной среды во время транспортировки.
  • При сборе образцов для транспортировки рекомендуется использовать стерильные ватные палочки или деревянные палочки. Тампон следует ввести на одну треть глубины среды, и при плотном завинчивании крышки тампон вдавливается на дно среды. Важно сохранять среду прохладной во время транспортировки, но избегать ее замораживания, так как экстремальные температуры могут повлиять на жизнеспособность организмов.
  • Хотя транспортная среда Amies эффективно сохраняет образцы во время транспортировки, жизнеспособность организмов со временем может снижаться. Более длительные периоды транспортировки также могут привести к некоторому росту загрязняющих веществ. Поэтому очень важно как можно скорее после транспортировки инокулировать образец на подходящую питательную среду, чтобы получить оптимальные результаты. В идеале промежуток времени между сбором образца и инокуляцией должен быть сведен к минимуму.
  • Стоит отметить, что культуры на транспортных смывах не следует держать при комнатной температуре более 24 часов во избежание риска зарастания или потери жизнеспособности.
  • Таким образом, транспортная среда Эмиса представляет собой улучшенную транспортную среду, содержащую древесный уголь, который повышает жизнеспособность патогенных организмов во время транспортировки. Это полутвердая непитательная среда, которая обеспечивает подходящую среду для выживания микроорганизмов, подавляя саморазрушительные ферментативные реакции и реакции токсического окисления.

Принцип транспортной среды Эмиса

Принцип транспортной среды Эмиса заключается в обеспечении оптимальной среды для транспортировки и сохранения чувствительных патогенов, таких как Neisseria gonorrhoeae. Эта транспортная среда предназначена для поддержания жизнеспособности и целостности бактериальных клеток во время транспортировки из места сбора в лабораторию для дальнейшего анализа.

Amies Transport Medium достигает этого за счет включения нескольких ключевых компонентов. Тиогликолят натрия и небольшое количество агара присутствуют в среде для создания восстановленной среды. Это снижение доступности кислорода помогает предотвратить чрезмерный рост загрязняющих веществ и поддерживать жизнеспособность целевых патогенов. Восстановленная среда особенно важна для выживания анаэробных организмов.

Добавление древесного угля в транспортную среду Эмиса играет решающую роль в нейтрализации материалов, которые могут быть токсичными для чувствительных патогенов, таких как Neisseria gonorrhoeae. Древесный уголь действует как адсорбент, связывая и удаляя токсичные вещества, которые потенциально могут повредить или затормозить рост бактерий во время транспортировки.

Кроме того, среда содержит соли кальция, магния, калия и натрия. Эти соли помогают поддерживать выживание гонококковых клеток, обеспечивая необходимые питательные вещества и поддерживая осмотический баланс. Они способствуют контролю проницаемости бактериальной ячейка мембраны, что важно для защиты клеток от внешних стрессоров и предотвращения утечки клеточного содержимого.

Фосфаты также включаются в среду в качестве буферных агентов. Они помогают поддерживать рН среды в подходящем диапазоне, обеспечивая стабильность бактериальных клеток при транспортировке. Надлежащий контроль pH имеет решающее значение для сохранения жизнеспособности патогенов и предотвращения потенциального ущерба, вызванного колебаниями pH.

Таким образом, принцип транспортной среды Amies заключается в создании уменьшенной среды, нейтрализации токсичных веществ, снабжении необходимыми питательными веществами, контроле проницаемости и буферизации pH среды. Благодаря включению этих компонентов транспортная среда Эмиса обеспечивает выживаемость, целостность и жизнеспособность чувствительных патогенов, таких как Neisseria gonorrhoeae, во время их транспортировки из места сбора в лабораторию для диагностических целей.

Состав транспортной среды Эмиса

Ингредиенты: г/литр
Хлорид натрия 3.000
Хлорид калия 0.200
Хлорид кальция 0.100
Хлорид магния 0.100
Монокалийфосфат 0.200
Динатрийфосфат 1.150
Тиогликолят натрия 1.000
Угольный 10.000
агар 4.000

Конечный рН (при 25°С) 7.2±0.2

Приготовление транспортной среды Эмиса

Ниже приводится пошаговое руководство по подготовке транспортной среды Amies:

  1. Начните с измерения 20 граммов агара Эмиса и поместите его в контейнер.
  2. Добавьте в контейнер 1 литр дистиллированной воды, убедившись, что агар полностью погружен в воду.
  3. Нагрейте смесь, доведя до кипения. Продолжайте нагревать, пока агар полностью не растворится в воде.
  4. Пока смесь еще горячая, осторожно распределите ее по бутылочкам с завинчивающимися крышками. Перемешивайте смесь, пока вы наливаете, чтобы древесный уголь равномерно распределялся по всей среде.
  5. После того, как бутылки наполнены, плотно завинтите крышки, чтобы обеспечить плотное прилегание.
  6. Для стерилизации среды поместите флаконы в автоклав. Установите в автоклаве температуру 121°C и продолжительность 15 минут. Этот процесс эффективно убивает любые потенциальные микроорганизмы, присутствующие в среде.
  7. После автоклавирования переверните бутылки, пока они остывают. Это помогает равномерно распределить уголь по всей среде.
  8. После охлаждения храните бутылки в прохладном месте, пока они не будут готовы к использованию. При хранении важно поддерживать стерильность среды.
  9. При сборе образца убедитесь, что вы используете стерильные ватные тампоны, прикрепленные к деревянным палочкам.
  10. Осторожно вставьте тампон в транспортную среду Amies, протолкнув его на одну треть глубины среды.
  11. Обрежьте деревянную палочку так, чтобы при завинчивании колпачка тампон прижимался к дну среды, обеспечивая оптимальный контакт.
  12. Надежно затяните крышку на флаконе, чтобы сохранить целостность среды во время транспортировки.
  13. В течение всего периода транспортировки очень важно держать бутыль прохладной, чтобы сохранить жизнеспособность любых микроорганизмов, присутствующих в образце.

Следуя этим шагам, вы сможете эффективно подготовить транспортную среду Эмиса для сбора и транспортировки образцов в микробиологической лаборатории или клиническом учреждении.

Инокуляция среды

Транспортная среда Эмиса обычно используется в клинических условиях для транспортировки и хранения различных типов образцов, особенно образцов, собранных на стерильные ватные тампоны. Правильный метод посева имеет решающее значение для обеспечения целостности образца во время транспортировки и сохранения его жизнеспособности для последующего лабораторного анализа. Вот пошаговое руководство по методу инокуляции транспортной среды Эмиса:

  1. Проверка срока годности: Клиникам и медперсоналу необходимо проверить срок годности транспортной среды Amies перед ее использованием. Среды с истекшим сроком годности могут не обеспечивать оптимальных условий для хранения и транспортировки образцов.
  2. Сбор образцов: Используя стерильный ватный тампон, возьмите образец с соответствующего участка или области интереса. С тампоном следует обращаться осторожно, чтобы сохранить стерильность.
  3. Погружение в среду: Погрузите кончик ватного тампона в транспортную среду Эмиса. Палочка тампона должна быть отрезана или сломана, чтобы можно было плотно закрыть крышку бутылки. Это обеспечивает надежную герметизацию и предотвращает утечку во время транспортировки.
  4. Вставка в среду: Вставьте тампон в среду ватным наконечником вниз. Тампон следует вводить примерно на одну треть глубины среды. Такая глубина обеспечивает достаточный контакт между образцом и средой для оптимальной сохранности.
  5. Регулировка тампона: Если палочка для тампона длиннее трубки, ее следует отрезать или сломать, чтобы она подошла по размеру. Эта регулировка гарантирует, что колпачок можно надежно завинтить без каких-либо препятствий.
  6. Затяжка крышки: Плотно закрутите крышку транспортной среды Эмиса. По мере затягивания крышки тампон будет опускаться на дно среды, обеспечивая надлежащий контакт и погружение образца.
  7. транспортныеn: Важно доставить образец в лабораторию как можно скорее, чтобы свести к минимуму любую потенциальную деградацию. В идеале транспортировка должна быть завершена в течение 6 часов. Однако при необходимости максимальный срок перевозки может быть продлен до 24 часов. Во время транспортировки очень важно поддерживать холодовую цепь, чтобы среда оставалась охлажденной. Однако его не следует замораживать, так как замораживание может повредить образец.

Следуя этим рекомендациям по методу инокуляции транспортной среды Эмиса, персонал клиник и отделений может эффективно сохранять и транспортировать образцы для точного лабораторного анализа.

Результат на Amies Transport Medium

микроорганизмы Рост
Кишечная палочка Хорошее восстановление на субкультуре
Klebsiella пневмонии Хорошее восстановление на субкультуре
Neisseria meningitidis Хорошее восстановление на субкультуре
Синегнойной палочки Хорошее восстановление на субкультуре
Сальмонелла тифи Хорошее восстановление на субкультуре
Shigella Флекснера Хорошее восстановление на субкультуре
Золотистый стафилококк подвид. золотистый Хорошее восстановление на субкультуре
холерный вибрион Хорошее восстановление на субкультуре
Bacteroides fragilis Хорошее восстановление на субкультуре
Гемофильной инфекции Хорошее восстановление на субкультуре
Гонококков Хорошее восстановление на субкультуре
Streptococcus pyogenes Хорошее восстановление на субкультуре

Контроль качества транспортной среды Amies

Контроль качества транспортной среды Amies необходим для обеспечения ее эффективности и надежности при сохранении и транспортировке микробиологических образцов. Вот некоторые ключевые аспекты контроля качества для этого носителя:

  1. Внешний вид: Amies Transport Medium должен иметь вид однородного сыпучего порошка от серого до черного цвета. Любое отклонение от этого внешнего вида может указывать на потенциальную проблему с качеством или стабильностью носителя.
  2. желирующий: Среда должна превратиться в полутвердую консистенцию, сравнимую с консистенцией 0.4% агарового геля. Это свойство важно, так как способствует правильному сохранению и транспортировке микроорганизмов.
  3. Цвет и прозрачность приготовленной среды: После приготовления среда должна образовывать в пробирках непрозрачные гели черного цвета. Эта визуальная характеристика указывает на правильную рецептуру и успешное образование геля.
  4. реакция: 2% вес./об. водный раствор транспортной среды Эмиса должен иметь pH 7.2 ± 0.2 при 25°C. Этот диапазон рН обеспечивает совместимость среды с ростом и жизнеспособностью микроорганизмов.
  5. Культурный ответ: Контроль качества включает оценку культуральной реакции конкретных микроорганизмов при субкультивировании на соевом казеиновом агаре (M290) после инкубации при температуре 35–37°C в течение 18–24 часов. Ожидаемый обильный рост (50-100 КОЕ) различных микроорганизмов, таких как Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Neisseria meningitidis, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella Typhi, Shigella flexneri, Золотистый стафилококки Vibrio cholerae подтверждает способность среды поддерживать рост этих организмов.
  6. Хранение и срок годности: Надлежащие условия хранения имеют решающее значение для поддержания качества транспортной среды Amies. Его следует хранить при температуре 10-30°С в плотно закрытой таре, а приготовленную среду следует хранить при температуре 5-25°С. Продукт следует использовать до истечения срока годности, указанного на этикетке, чтобы обеспечить оптимальную эффективность. Следует позаботиться о хранении продукта в сухом проветриваемом помещении, защищенном от экстремальных температур и потенциальных источников воспламенения. Плотно закрывайте бутылку после использования, чтобы предотвратить образование комков из-за гигроскопичности продукта.

Соблюдая эти меры контроля качества, лаборатории могут гарантировать, что транспортная среда Amies является надежной, эффективной и способной точно сохранять и транспортировать микробиологические образцы.

Использование транспортной среды Эмиса

Транспортная среда Эмиса широко используется для сбора, транспортировки и сохранения различных микробиологических образцов. Его универсальное применение делает его незаменимым инструментом в области микробиологии. Вот некоторые ключевые области применения Amies Transport Medium:

  • Образцы мазков из горла, влагалища и раны: Транспортная среда Эмиса особенно подходит для сбора и сохранения образцов, полученных из зева, влагалища и ран. Это обеспечивает благоприятную среду для выживания и жизнеспособности микроорганизмов, присутствующих в этих образцах, во время транспортировки в лабораторию.
  • мокрота: При работе с образцами мокроты гнойную часть мокроты можно перенести на ватный тампон и поместить в контейнер с транспортной средой Эмиса. Эта среда не только обеспечивает выживание патогенов, таких как Streptococcus pneumoniae и Haemophilus influenzae, но также предотвращает разрастание быстро размножающихся комменсальных бактерий.
  • Гной: Для сбора образцов гноя можно использовать стерильный ватный тампон. В случаях, когда гной не выделяется, можно использовать стерильный ватный тампон для взятия образца непосредственно из зараженного участка. Затем собранный образец помещают в контейнер с транспортной средой Эмиса. Чтобы обеспечить надлежащую герметизацию, палочку с тампоном следует отломить, чтобы можно было плотно закрыть бутылку.
  • Назофарингеальный препарат: Для выявления носителей Neisseria meningitidis берут мазок из носоглотки и доставляют в лабораторию. Для этой цели обычно используется транспортная среда Эмиса, наряду со средой Стюарта. В качестве альтернативы образец можно сразу поместить на подходящую среду и транспортировать в системе, содержащей CO2. Транспортная среда Эмиса также находит применение при подозрении на Bordetella pertussis и Corynebacterium diphtheriae.
  • Урогенитальный мазок: Транспортная среда Эмиса считается наиболее эффективной средой для транспортировки уретральных, цервикальных и вагинальных мазков. Он обеспечивает выживание деликатных микроорганизмов, таких как Haemophilus ducreyi, вызывающий мягкий шанкр, и Neisseria gonorrhoeae. Использование транспортной среды Эмиса в урогенитальных образцах помогает поддерживать жизнеспособность этих организмов во время транспортировки в лабораторию.

Транспортная среда Эмиса играет решающую роль в сохранении целостности и жизнеспособности микроорганизмов, присутствующих в различных типах образцов во время транспортировки. Его использование в различных клинических условиях способствует точному и надежному микробиологическому анализу, помогая в диагностике и лечении инфекционных заболеваний.

Ограничения транспортной среды Amies

Хотя транспортная среда Amies обладает рядом преимуществ при сохранении и транспортировке микробиологических образцов, она не лишена ограничений. Эти ограничения следует учитывать для обеспечения точных и надежных результатов диагностических процедур. Ниже приведены некоторые заметные ограничения Amies Transport Medium:

  • Свежесть и ресуспендирование древесного угля: Перед использованием среда требует бережного обращения. Старая среда должна быть свежепропаренной, а уголь, присутствующий в среде, необходимо правильно ресуспендировать. Несоблюдение этих инструкций может повлиять на эффективность среды и поставить под угрозу жизнеспособность микроорганизмов.
  • Рост загрязнения: В течение продолжительного периода транспортировки существует вероятность некоторого увеличения количества загрязняющих веществ в транспортной среде Amies. Загрязняющие вещества могут мешать анализу целевых микроорганизмов и потенциально приводить к ложноположительным или ложноотрицательным результатам. Крайне важно свести к минимуму время транспортировки и осторожно обращаться с образцами, чтобы свести к минимуму риск загрязнения.
  • Своевременная прививка: После транспортировки необходимо как можно скорее перенести образец из транспортной среды Эмиса в соответствующую культуральную среду. Для получения оптимальных результатов следует свести к минимуму временной интервал между сбором образца и посевом на культуральную среду. Длительное воздействие транспортной среды Эмиса может повлиять на жизнеспособность и характеристики роста микроорганизмов, что может привести к неточным результатам.
  • Непригодность для привередливых организмов: Транспортная среда Amies может не подходить для перевозки требовательных организмов. Привередливые организмы имеют специфические и часто сложные потребности в питательных веществах для роста, а непитательная природа транспортной среды Эймса может не обеспечить адекватной поддержки их жизнеспособности во время транспортировки. Альтернатива транспортные средства массовой информации В таких случаях следует рассмотреть возможность использования препарата, специально разработанного для требовательных организмов.
  • Снижение жизнеспособности гонококков: Хотя транспортная среда Эмиса может поддерживать выживание Neisseria gonorrhoeae (гонококков) в течение ограниченного периода времени, количество этих бактерий значительно уменьшается после 24 часов хранения в среде. Если первоначальный образец содержит небольшое количество гонококков, их выделение может быть поставлено под угрозу по истечении этого периода времени, что может привести к ложноотрицательным результатам. Поэтому быстрый анализ и посев на соответствующие питательные среды имеют решающее значение для точного обнаружения гонококков.

Чтобы смягчить эти ограничения, важно тщательно следовать инструкциям производителя по приготовлению и использованию транспортной среды Amies. Кроме того, минимизация времени транспортировки, осторожное обращение с образцами и рассмотрение альтернативных транспортных сред для требовательных организмов могут помочь обеспечить точность и надежность микробиологического анализа и диагностики.

FAQ

Что такое транспортная среда Эмиса?

Транспортная среда Эмиса представляет собой тип питательной среды, используемой для сбора, сохранения и транспортировки клинических образцов, особенно образцов, полученных на ватных тампонах. Он обеспечивает подходящую среду для поддержания жизнеспособности микроорганизмов во время транспортировки.

Каков состав транспортной среды Эмиса?

Транспортная среда Эмиса обычно состоит из забуференного солевого раствора, древесного угля и гелеобразователя, такого как агар. Некоторые варианты могут также содержать антимикробные агенты для подавления роста бактерий.

Какова цель использования транспортной среды Amies?

Основная цель транспортной среды Эмиса — сохранить жизнеспособность и целостность микроорганизмов, присутствующих в клинических образцах, во время транспортировки в лабораторию. Он помогает поддерживать жизнеспособность бактерий, вирусов и других патогенов, обеспечивая точный лабораторный анализ.

Какие типы образцов можно транспортировать с помощью транспортной среды Amies?

Транспортная среда Amies подходит для транспортировки образцов, собранных на ватных тампонах, таких как мазки из горла, носа, мазков из ран и генитальных мазков. Он обычно используется для микробиологического тестирования, включая бактериальную культуру и тестирование чувствительности.

Как следует хранить транспортную среду Amies?

Транспортную среду Amies следует хранить при температуре, рекомендованной производителем, обычно от 2°C до 8°C. Важно соблюдать условия хранения для сохранения жизнеспособности микроорганизмов.

Каков срок годности транспортной среды Amies?

Срок годности транспортной среды Amies варьируется в зависимости от производителя и конкретного состава. Крайне важно проверить срок годности перед использованием, поскольку среды с истекшим сроком годности могут не обеспечивать оптимальную среду для сохранения образцов.

Можно ли заморозить транспортную среду Эмиса?

Нет, транспортную среду Amies не следует замораживать. Замораживание может повредить жизнеспособности микроорганизмов и повлиять на целостность образца. Рекомендуется поддерживать холодовую цепь во время транспортировки, но избегать замораживания среды.

Как долго образцы могут храниться в транспортной среде Эмиса?

Образцы, собранные в транспортной среде Эмиса, следует доставить в лабораторию как можно скорее, предпочтительно в течение 6 часов. Однако при необходимости образцы могут храниться в среде максимум 24 часа при соблюдении надлежащего температурного режима.

Можно ли использовать транспортную среду Эмиса для переноса вируса?

Транспортная среда Эмиса в первую очередь предназначена для транспортировки бактерий, но ее также можно использовать для некоторых вирусных образцов. Однако для специфического переноса вируса существуют специальные транспортные среды, которые обеспечивают более подходящую среду для сохранения вируса.

Существуют ли какие-либо ограничения или меры предосторожности при использовании транспортной среды Amies?

Важно следовать инструкциям и рекомендациям производителя по правильному использованию транспортной среды Amies. Некоторые меры предосторожности включают проверку на наличие утечек или поврежденной упаковки, обеспечение надежной герметизации и предотвращение загрязнения во время сбора образцов и посева. Кроме того, крайне важно правильно маркировать образцы и предоставлять всю необходимую информацию в лабораторию для проведения точного анализа.

Рекомендации

  • https://exodocientifica.com.br/_technical-data/M651.pdf
  • https://www.onlinebiologynotes.com/amies-transport-medium-composition-preparation-and-uses/
  • https://microbiologie-clinique.com/antibiotic-susceptibility-testing.html
  • https://microbeonline.com/amies-transport-medium/
  • https://www.clinisciences.com/en/buy/cat-amies-medium-transport-media-for-5546.html
  • https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/manuals/IFU60060.pdf
Источник

Артикул: R00078

Изделие представляет собой стерильный комплект, содержащий пробирку с транспортной средой Эймса агаризованной с углем, герметично укупоренную винтовой крышкой, и зонд-тампон для отбора пробы. Каждая пробирка со средой вместе с зонд-тампоном запаяны в герметичную блистерную упаковку.

Предназначено для отбора, транспортировки и хранения образцов биологического материала, потенциально содержащего бактерии III-IV групп патогенности.

Вспомогательное средство в диагностике инфекционных заболеваний.

Транспортная среда Эймса используется для широкого круга микроорганизмов самых разнообразных биологических субстратов (отделяемое слизистых оболочек, пробы из очагов воспаления, гной, раневое отделяемое и др.), кроме кала.

Для профессионального применения. Изделие однократного применения.

Система транспортная со средой Эймса агаризованной с углем:

  • Транспортная среда для широкого круга микроорганизмов самых разнообразных биологических субстратов,
  • Сохранение биоматериала до 48 часов при температуре 2-8 ºC,
  • Объем транспортной среды — 4 мл,
  • Подходит для дальнейшего высева микроорганизмов на все питательные среды,
  • Универсальный зонд-тампон с вискозной головкой,
  • Ось зонда-тампона с точкой разлома,
  • Фиксация зонда-тампона в крышке пробирки,
  • Этикетка с полями для внесения информации о пациенте и образце.

Регистрационное удостоверение: медицинское изделие в процессе регистрации.

Источник

Понравилась статья? Поделить с друзьями:

Это тоже интересно:

  • Среда кмафанм инструкция по применению
  • Среда пбл для листерий инструкция
  • Среда кларка инструкция по применению
  • Среда олькеницкого инструкция по применению
  • Среда кесслера инструкция по применению

    • Подписаться
    Уведомить о
    guest

    0 комментариев
    Старые
    Новые Популярные
    Межтекстовые Отзывы
    Посмотреть все комментарии